雙抗體夾心法：首先把已知非特異抗體（單抗或多抗）以一定的量抱被于膜上做為檢測帶，能與金標物相結合的二抗做為質量控制帶。與抱被抗體般配對的另一單抗金標結合物則粘附于金標墊著然后進行干躁。干燥金標墊一端與膜相連，一端與試品墊相接。膜的另一側黏貼吸水墊。檢測時，于試品墊添加一定量的液態樣版，依靠毛細管作用，樣版沿試品墊到吸水墊方向挪動。它首要通過干躁金標墊，使金標結合物復溶，如樣本中尚需測抗原，則產生抗原抗體反應，產生物質A（金顆粒物－抗體－抗原）；樣版繼續移動抵達檢測帶部位，則與抱被抗體再次出現抗原抗體反應，產生物質B（金顆粒物－抗體－抗原－抱被抗體），并且于檢測帶部位集聚，從而達到明顯的水平，如樣版中無待檢抗原，則無法產生很明顯的鮮紅色雜帶。分散的金標結合物或物質A翻過檢測帶抵達質量控制帶，與二抗產生反應，產生物質C（金顆粒物－抗體－二抗），集聚從而產生很明顯的鮮紅色雜帶。不管樣版中是不是帶有待檢化學物質，質量控制帶都是會展現鮮紅色雜帶。

雙抗體夾心法（double antibody sandwich format）主要運用于檢測較大的生物分子及顆粒性抗原（細菌和病毒、病毒感染、蛋白、LPS等）。膠體金廠家介紹大一點的抗原分子結構有多個抗原結構域，對不同狀況可以采取單抗跟多抗匹配或單抗和單抗配對檢測。單抗匹配時解決兩株單抗開展結構域剖析，結構域距離很遠的單抗，其匹配檢測效果就越好。有人說在一些前提下，可以用同一株單抗制取雙抗體夾心實驗試劑，基礎是抗原有著多個同樣的結構域用以融合抗體。

雙抗原夾心法：雙抗原夾心法的特性取決于抱被和標識均是抗原，檢測時，試品里的待檢抗體首先與標識抗原融合，再和抱被抗原融合。其質量控制線應抱被標識抗原的多抗，但實際檢測中，質量控制線效果通常不太好。

雙抗原夾心法檢測抗體的優勢取決于它檢測是指總抗體，即樣版里的IgG、IgM、IgA等非特異抗體都可做為搭橋術抗體產生陽性結果，對其人獸共患病的檢測更有價值，膠體金廠家既可以用其檢測人血清抗體，也可以檢測動物血清抗體，以此來實現用同一種檢測實驗試劑檢測不一樣屬種的抗體。此外，雙抗原夾心法的非特異和敏感性易于控制，而且可以達到非常高的水平。